另一方面,为了减少冰晶对细胞的伤害,保证冻存效果,选择*佳的降温程序和速度也很重要。目前多采用的降温程序是分段降温法,即利用不同温级的冰箱或液氮储存罐,将活细胞在不同的温度段分段降温冷却,例如从室温降至4℃,再依次降至-40℃、-80℃、-196℃(在各温度段持续时间视细胞的类型而定)。关于*佳降温的速度,不同类型的细胞相差较大,与细胞的性质特别是质膜的渗透率有关。一般来说,以每分钟下降1~10℃的速度可得到良好的效果。目前*广泛使用的冷冻剂是液氮,其沸点是-196℃。液氮对细胞材料的pH没有影响,气化时也不留沉淀。在体外培养的细胞,从增殖期到形成致密单层前的细胞都可用于冻存,但一般认为处于对数生长期的细胞用于冻存效果*佳。
当需要使用冻存的细胞时,可加温使之复苏,复苏后的细胞可继续培养增殖用于研究或实验。冻结的细胞复苏要以快速融化为原则,以防小冰晶变为大冰晶而对细胞造成损伤。
(一)培养细胞的冻存
(1)细胞冻存液的配制。在含20%~30%的小牛血清的1640培养基中加入二甲亚砜,使其终浓度为10%(或者加入丙三醇并使终浓度为5%)。
(2)冻存管的处理。新购置的一次性塑料冻存管一般为无菌包装,无需处理,使用方便,但价格较高。在一般情况下可用1.5mL小离心管(ep管)代替。市售的ep管可用三蒸馏水漂洗1~2次,高温蒸汽**,烘干后备用。
(3)将一瓶处于对数生长期并已长成单层HeLa细胞或其他培养细胞从培养箱中取出,在超净台中按无菌操作,倾去培养液,往瓶中加入0.25%的胰蛋白酶1mL,使其湿润整个瓶底,在室温下消化处理1~3min,待单层出现空隙时倒去胰酶,再加入2mL培养液,用吸管将细胞吹打混匀成细胞悬液。
(4)在无菌状态下,将细胞悬液移入无菌的带盖刻度离心管内,加盖。放人离心机��以800r/min离心8min。
(5)弃上清液,加入1mL冻存培养液,吹打混匀成细胞悬液。
(6)吸取少量悬液进行细胞计数,将细胞的浓度用冻存培养液调整到每毫升300万左右。因为细胞的浓度对冻结和融化时细胞的活力有显著影响,细胞浓度低时失活较显著。
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